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Résumé du colloque
Les cellules gliales, intimement associées aux synapses, possèdent dans leur membrane plasmique divers canaux ioniques dont la localisation peut être importante pour la régulation de la fonction synaptique. Puisque le Ca2+ est un messager secondaire essentiel dans plusieurs fonctions cellulaires, cette étude vise à caractériser les canaux calciques aux cellules de Schwann périsynaptiques (CSP) qui sont les cellules gliales à la jonction neuromusculaire (JNM) de grenouille. La mesure des changements intracellulaires de Ca2+ a servi à l'analyse de l'activité de ces canaux. En dépolarisant la membrane des CSP, avec une solution physiologique à haute teneur en K+ (KCl 50 mM) ou provoquant l'entrée de Ca2+ qui fut aboli en présence de bloqueurs des canaux Ca2+ de type L. De plus l'activation des récepteurs à l'ATP de type P2x par un agoniste (a,b-meATP; 50 μM) provoque l'ouverture de ces canaux Ca2+. La distribution cellulaire des canaux fut observée, en microscope confocale, en utilisant un anticorps polyclonal dirigé contre les canaux Ca2+ de type L. De plus, une distribution uniforme de points tout le long de la JNM et l'exclusion du corps cellulaires des CSPs. Le marqueur a-bungarotoxin-TRITC permet de délimiter les plaques motrices et les bandes des récepteurs d'acétylcholine. Un patron de distribution similaire fut observé avec l'utilisation de dihydropyridines fluorescentes, spécifiques des canaux Ca2+ de type L. D'autres expériences ont permis d'éliminer les possibilités que le marquage soit localisé à la membrane postsynaptique ou à la membrane postsynaptique de la plaque motrice. Ces résultats suggèrent la présence de canaux aux processus des CSP, une étroite relation avec les sites de libération de neurotransmetteurs.
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