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Contribution de l'aire corticale 17 aux propriétés fonctionnelles spatiales et temporelles des cellules de l'aire 18 du Chat
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Les aires corticales 17 et 18 du Chat reçoivent chacune une projection du champ visuel. Les connexions anatomiques réciproques entre ces deux aires sont maintenant bien établies. Tovée récemment nous avons proposé que l'aire 17 contribue dans le déterminisme des propriétés fonctionnelles des neurones de l'aire 18. Les impacts de l'aire 17 peuvent être de nature excitatrice, facilitatrices, selon que le cellule et la différence entre les rétines les préférentielles des cellules des deux structures. Ce travail de recherche étudie les effets des déflexions temporelles (FT) du stimulus dans cette relation. Nos expériences s'effectuent sur des chats normaux anesthésiés et …

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Le Complexe Latéral-Postérieur-Pulvinar (L.P.P) du thalamus: son rôle dans la formation de réseaux de neurones du cortex visuel
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Chacune des sans un vaste ensemble de neurones, les cellules nerveuses ne fonctionnent qu'en réseau; dès lors la question qui se pose est: comment s'effectue la liaison fonctionnelle qui associe les neurones en un ensemble dynamique dédié à l'analyse neuronale d'une cible particulière? L'hypothèse "à la mode" stipule que les cellules d'un réseau engagé dans une tâche neuronale oscillent en diapason à une fréquence approximative de 40Hz. De plus, ces cellules seraient détectrices de synchronisation, car pour établir ce rythme les impulsions nerveuses issues de deux ou davantage sources neuronales doivent être en survenir "quasi-simultanément". Les travaux de notre laboratoire …

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Contribution du Complexe Latéral Postérieur du Pulvinar aux réponses des cellules corticales aux basses fréquences spatiales
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L'objectif général est d'étudier l'influence du complexe thalamique latéral Postérieur pulvinar (L.P-P) sur les réponses aux réseaux défilants sinusoïdaux (RDS) des cellules des aires 17 et 18 du cortex visuel du chat. Nos expériences s'effectuent sur des chats normaux et adultes anesthésiés et préparés pour l'enregistrement unicellulaire. La zone du L.P-P est inactivée par l'injection, à l'aide d'une micropipette de 300 nanolitres d'acide gamma-aminobutyrique (GABA) dilué dans une solution saline colorée par du bleu de méthylène. La même micropipette sert aussi à enregistrer l'activité multiunitaire pour déterminer les propriétés visuelles des cellules diluées au niveau du site d'injection du GABA. …

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