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La production simultanée de deux β-lactamases par une bactérie résistante est un phénomène apparemment rare et difficilement mis en évidence par les méthodes enzymologiques usuelles. L'utilisation de méthodes biologiques (antisérums, diffusion en gélose) en combinaison avec des méthodes biochimiques (microacidimétrie, purification par chromatographie d'affinité) permet de révéler aisément la présence de deux enzymes, chez les souches qui montrent un profil de résistance élevé, à la fois vis-à-vis des pénicillines et des céphalosporines.
Des transferts in vivo de la résistance bactérienne ont été tentés chez la souris dans le système suivant : une souche de Salmonella St-Paul, porteuse du plasmide TEM qui lui confère une résistance enzymatique vis-à-vis des Bêta-lactamines, est utilisée comme donatrice. Les bactéries de la flore normale du tube digestif agissent alors comme réceptrices. Les transferts sont repérés par une technique d'immuno-acidimétrie, chez les souches susceptibles d'avoir reçu le plasmide.
Des transferts in vivo de la résistance bactérienne ont été tentés chez la souris dans le système suivant : une souche de Salmonella St-Paul, porteuse du plasmide TEM qui lui confère une résistance enzymatique vis-à-vis des Bêta-lactamines, est utilisée comme donatrice. Les bactéries de la flore normale du tube digestif agissent alors comme réceptrices. Les transferts sont repérés par une technique d'immuno-acidimétrie, chez les souches susceptibles d'avoir reçu le plasmide.
Des transferts in vivo de la résistance bactérienne ont été tentés chez la souris dans le système suivant : une souche de Salmonella St-Paul, porteuse du plasmide TEM qui lui confère une résistance enzymatique vis-à-vis des Bêta-lactamines, est utilisée comme donatrice. Les bactéries de la flore normale du tube digestif agissent alors comme réceptrices. Les transferts sont repérés par une technique d'immuno-acidimétrie, chez les souches susceptibles d'avoir reçu le plasmide.